sposoby kontroli inicjacji transkrypcji u bakterii to
a) kontrola konstytutywna,zależna od wydajności promotora-ta zaś zalezy od jego siły na co się składa :sekwencja w bloku -35 i -10 oraz odleglość między nimi
b) regulacja inicjacji transkrypcji zależna od białek aktywatorowych
Drugim sposobem nie chcialbym sie zajmowac ze wzgledu na jego zlozoność .Do analiz promotorów konstytutywnych dla podjednostki sigma 70 posłuzył mi program :
Kod: Zaznacz cały
linux1.softberry.com/berry.phtml?topic=bprom&group=programs&subgroup=gfindb
Za przykład niech posłuzy operon rfaQp1.:
Kod: Zaznacz cały
biocyc.org/ECOLI/NEW-IMAGE?type=OPERON&object=TU0-7161
Promotor rzeczywisty: LDF- 4.60 -10 box at pos. 46 TGATACACT Score 56 -35 box at pos. 31 TTGCTG Score 47 (analizowałem 200pz od poczatku genu).
zgodny z rzeczywistym promotorem,z ktorego nastepuje start transkrypcji.Wielkość LDL(tutaj 4,60)opisuje zwiazek miedzy blokami -35 i -10 a dlugoscia miedzy nimi.Im wiekszy LDL tym silniejszy ,a scislej wieksze prawdopodobienstwo startu transkrypcji w tym miejscu.Z ciekawości sprawdziłem cały operon-zarowno nic kodujacą ,jak i komplementarną.Wynik okazał się zaskakujacy.Okazało się ,że w operonie są w sumie aż 24 potencjalne promotory o porownywalnym LDL jak rzeczywisty ,z czego kilkanascie wyraznie silniejszych .
Pytanie :w jaki sposób RNAP wybiera ten własciwy promotor ,a pomija inne? Czym się kieruje enzym w odnalezieniu tegosłusznego"skoro zarowno sekwencje jak i odleglosci miedzy nimi prowadziłyby do błędnej inicjacji transkrypcji.
Program ten,jak i ta rekomendowana książka, nie dają na to odpowiedzi,a przeciez jest to fundamentalne zagadnienie w przypadku wiekszosci promotorow konstytutywnych.